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SILAC實驗技術于2002年首次引入，作為南丹麥大學實驗生物信息學中心 (CEBI) 的一種代謝標記技術。在活細胞的生長培養基中使用了穩定的同位素標記的氨基酸，隨后可以對不同實驗條件下的細胞蛋白質組學進行廣泛比較。輝駿生物SILAC定量蛋白質組學實驗技術服務擁有10多年豐富經驗；公司自有蛋白質組學平臺，silac蛋白質譜分析外包代作價格低，已幫助眾多科研者發表高分文獻。

定量蛋白質組學可分為相對定量和絕對定量。 相對定量是研究不同情況下蛋白質組表達的差異，主要方法有穩定同位素標記和無標記定量。 絕對定量是獲得蛋白質的特定表達水平。 以下是相對定量蛋白質組學常用的一些技術:iTRAQ，SILAC，TMT等實驗

蛋白質豐度對于免疫沉淀至關重要,在免疫沉淀 (IP) 過程中，感興趣的蛋白質 (POI) 被結合到珠子（如瓊脂糖或磁性瓊脂糖）上的特定抗體或納米抗體拉下。通過洗滌去除未結合的樣品內容物，例如其他蛋白質、細胞碎片和脂質，而沉淀的蛋白質在珠子上富集。對于成功的 IP，POI 的豐度或表達水平至關重要，不幸的是，這經常被遺忘。如果 POI 表達強烈且豐富，那么 IP 很可能是直截了當的，沒有任何困難，但是，如果 POI 以低豐度或表達水平存在，則可能需要優化 IP 協議。

蛋白質磷酸化是指由蛋白激酶催化，將ATP或GTP的γ位磷酸基團轉移到底物蛋白的氨基酸殘基（絲氨酸、蘇氨酸、酪氨酸等）上的過程。蛋白質磷酸化是體內常見的調節方式，在細胞信號轉導過程中發揮著重要作用。 幾乎所有的蛋白質在合成過程中或合成后都會發生某種形式的修飾。LC-MS/MS蛋白修飾位點鑒定單一蛋白或低復雜程度蛋白樣本的修飾鑒定，已知分子量的小分子藥物與蛋白結合的修飾位點鑒定，輝駿生物公司LC-MS/MS可以一次性鑒定成百上千種種蛋白質，準確性和靈敏度高，價格實惠

代謝組學主要通過研究代謝網絡中各種元素（如底物、產物、輔酶因子濃度、反應速度等）的變化規律，確定影響生物體最終生物表型的分子組成和調控機制。憑借數十年的經驗，輝駿生物致力提供可靠且具有成本效益的動植物代謝組學服務。我們的解決方案包括廣泛靶向代謝組學服務、非靶向代謝組學服務、靶向代謝組學、脂質組學服務?

可以與特定蛋白質或感興趣的生物分子結合的抗體稱為一抗。以大鼠、小鼠、山羊和兔等動物為宿主，以單克隆 (mAb)或多克隆抗體 (pAb)的形式生產一抗。二抗與直接附著于靶抗原的一抗結合。一抗的V區與抗原結合后，標記的二抗將其V區連接到一抗的莖或C區。

抗體也稱為免疫球蛋白，是一種非常特異的分子，可與其靶抗原結合并在最常見的情況下中和它。他們通過促進結構的變化、阻斷完成功能所需的結合位點或標記出它們與吞噬作用結合的細胞來實現這一目標。它們還可以幫助抗原或細胞聚集。抗體分為 A、D、E、G 和 M 類，其中最常見的是 IgG。這種形式常見于血液和組織中，很容易穿過胎盤并為胎兒提供第一次免疫力。 IgG 類有四個亞類，其結構略有不同，但每個亞類的“Y”臂末端都有兩個相同的抗原結合位點。

原代神經元培養物是研究細胞功能、蛋白質相互作用和神經毒性的有力工具，并有助于許多其他體外應用。 培養神經元的一些最大挫折可能是獲得低細胞產量和管理細胞死亡。優化您的神經元準備工作流程也可能既費時又費錢。輝駿生物蛋白質技術人員在下文提供七個技巧，或許能幫助提高您的初級神經元培養物的完整性。

生物標志物是可以標記系統、器官、組織、細胞和亞細胞的結構或功能發生變化或可能發生變化的生化指標，如DNA、RNA、蛋白質、酶、脂類、聚糖、代謝物等。用作研究的生物標志物。篩選生物標志物的常用蛋白質組學技術：質譜(MS)、 蛋白質微陣列、串聯質譜（TOF-TOF）

在典型的染色質免疫沉淀(ChIP)?反應中，目標蛋白和 DNA 的交聯是通過向生長的細胞中添加甲醛來進行的，染色質的制備、超聲剪切和預清除以減少非特異性免疫沉淀。使用特異性抗體進行免疫沉淀。從蛋白質A或蛋白質G瓊脂糖樹脂中洗脫蛋白質-DNA復合物后，加熱樣品以逆轉共價交聯。DNA片段通過PCR或實時PCR進行純化和分析。輝駿生物使用ChIP-qPCR、ChIP-seq等技術在染色質免疫共沉淀ChIP研究實驗技術服務超10年，公司在DNA與蛋白相互作用研究方面經驗豐富，自有實驗場地，ChIP外包代作服務價格優惠，實驗數據已協助發表上千位客戶發表高分論文

Co-IP 是一種有用且相對簡單的工具，可用于識別蛋白質-蛋白質相互作用。輝駿生物在本文將為您的Co-IP實驗做好準備，提供一個方便的 CoIP 協議并討論您應該包含的coip控件。輝駿專注免疫共沉淀CoIP、Co-IP WB、Co-IP MS實驗技術服務近10年，專業的蛋白質互作技術平臺和質譜平臺，全過程把控Co-IP實驗詳細步驟和產物的鑒定，高分文章案例多。

iTRAQ/TMT通過不同分子量的實際對不同來源樣品進行標記的方式，實現不同樣品間蛋白質組比較的目標，兩種方法都一次性完成（iTRAQ 8個/TMT 16個）全部樣品的定性定量分析，降低了實驗誤差，排除儀器造成的樣本間差異，穩定性更高，操作簡單，數據分析流程簡單，適用于所有物種蛋白的定量分析。